Certains flacons ne contiennent pas un composé, mais deux, trois ou quatre. Un tel mélange exige davantage de l’étiquette et du certificat d’analyse qu’un peptide seul, car chaque composant doit pouvoir être démontré séparément.
Ce qu’est un mélange
Un mélange est une combinaison de deux composés ou plus, lyophilisés ensemble dans un flacon, dans un rapport fixé par le fabricant. Vous ne pouvez pas modifier ce rapport vous-même : ce qui est dans le flacon est dans le flacon. Ce catalogue comprend quatre mélanges, avec la quantité telle que la boutique l’indique :
| Mélange | Composants | Quantité sur l’étiquette |
|---|---|---|
| BPC-157 + TB-500 | 2 | 10 mg ou 20 mg |
| CJC-1295 (no DAC) + Ipamorelin | 2 | 5 mg + 5 mg |
| GHK-Cu + BPC-157 + TB-500 (Glow) | 3 | 70 mg |
| GHK-Cu + BPC-157 + TB-500 + KPV (Klow) | 4 | 80 mg |
Pour CJC-1295 (no DAC) + Ipamorelin, la répartition figure dans le dosage lui-même : 5 mg plus 5 mg. Pour les trois autres, l’étiquette porte un seul poids total. La quantité de chaque composant contenue dans ce total n’est pas indiquée sur la page produit ; demandez la répartition au fournisseur ou lisez-la sur le certificat du lot. Un total de 70 mg ne dit encore rien du rapport entre trois composés.
Un flacon ou des flacons séparés
Un mélange et des flacons séparés diffèrent surtout par la liberté qu’ils laissent. Un mélange fixe le rapport et épargne des manipulations ; des flacons séparés vous permettent de peser et d’enregistrer chaque composé séparément. La forme qui convient dépend de votre protocole. Si vous souhaitez évaluer un composé, un composé par flacon est plus clair.
Cet article ne dit rien d’une action combinée ou synergique de composés dans un mélange. Ce n’est pas de la modestie mais un fait : de telles affirmations relèvent de recherches menées et publiées pour chaque combinaison, et elles n’ont pas leur place pour un produit strictement destiné à la recherche en laboratoire (RUO expliqué).
Comment un mélange est mesuré
Pour un peptide seul, la pureté est la part du pic principal dans le chromatogramme. Dans un mélange, il y a plus d’un pic principal, et le calcul change alors :
- Séparation. La méthode HPLC doit séparer les composants afin que chacun ait son propre pic. Si deux pics se chevauchent, aucun des deux chiffres n’est fiable.
- Pureté par composant. Un pourcentage de pureté se rapporte à un seul composé. Le COA d’un mélange porte donc plusieurs pourcentages, chacun avec le nom de son composant, et non un seul chiffre pour le flacon.
- Identité par composant. La spectrométrie de masse donne à chaque composant sa propre masse. Les quatre composés du plus grand mélange sont commodément éloignés les uns des autres : selon PubChem, GHK-Cu a une masse moléculaire de 402,9, KPV de 342,4, TB-500 de 889,0 et BPC-157 de 1419,5. Dans l’autre mélange, CJC-1295 sans DAC (3367,9) et l’ipamoréline (711,9) se distinguent tout aussi nettement. La lecture d’un tel spectre est expliquée dans Comment lire un spectre de masse.
- Teneur par composant. Un dosage de teneur compare le signal d’un composé à celui d’un étalon de référence de composition connue. Chaque composant nécessite donc son propre étalon. C’est pourquoi la répartition au sein d’un mélange est plus difficile à étayer que la quantité dans un flacon à composé unique.
Lire le COA d’un mélange
Examinez le certificat d’un mélange dans cet ordre :
- Tous les composants sont-ils listés ? Quatre composés sur l’étiquette signifient quatre lignes sur le certificat.
- Chaque composant a-t-il sa propre masse et sa propre pureté ? Un seul pourcentage pour tout le flacon ne suffit pas.
- Le numéro de lot correspond-il ? Un flacon de mélange a un seul numéro de lot, qui doit être identique au numéro figurant sur l’étiquette.
- La quantité totale est-elle indiquée, ainsi que la répartition ? Sinon, demandez-la.
- Le chromatogramme est-il joint ? C’est seulement là que vous pouvez voir si les pics sont réellement séparés.
- La méthode est-elle indiquée ? Colonne, longueur d’onde et gradient, afin que la mesure puisse être suivie.
L’explication générale des certificats figure dans Qu’est-ce qu’un COA ?, et la différence entre pureté et teneur en peptide dans Que signifie une pureté de 99 % ?
Stabilité
Dans un mélange, chaque composant apporte sa propre chimie. GHK-Cu est un complexe avec un ion cuivre, TB-500 est un fragment acétylé de sept résidus et BPC-157 une chaîne de quinze ; ces trois composés ne se dégradent pas de la même manière. La règle pratique est donc simple : suivez l’étiquette du flacon et partez du principe que le composant le plus sensible donne le rythme. Les réactions en jeu sont exposées dans Storing peptides in the lab.
Les composants ont leurs propres articles : BPC-157, TB-500, GHK-Cu, KPV, CJC-1295 et Ipamorelin.
Mélanges chez PulseChem : BPC-157 + TB-500, CJC-1295 (no DAC) + Ipamorelin, GHK-Cu + BPC-157 + TB-500 et GHK-Cu + BPC-157 + TB-500 + KPV. Le certificat de chaque lot figure sur la page produit et sur la page Résultats d’analyse.
Sources
Consultées en novembre 2026.
- Prezatide copper (GHK-Cu) (PubChem), CID 71587328 : masse moléculaire 402,92
- KPV (Lys-Pro-Val) (PubChem), CID 125672, répertorié sous le nom MSH (11-13) : masse moléculaire 342,43
- TB-500 (Ac-LKKTETQ) (PubChem), CID 62707662 : masse moléculaire 889,0
- BPC-157 (PubChem), CID 9941957 : masse moléculaire 1419,5
- CJC-1295 without DAC (PubChem), CID 56841945 : masse moléculaire 3367,9
- Ipamorelin (PubChem), CID 9831659 : masse moléculaire 711,9
- Les quantités et la composition des mélanges : les pages produit et les étiquettes de PulseChem, consultées le 14 novembre 2026
Cet article fournit des informations générales sur la recherche en laboratoire. Il ne s’agit ni d’un avis médical ni d’un mode d’emploi. Tous les produits sont destinés exclusivement à la recherche.
